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手持式藻類熒光測量儀(探頭式)

更新時間:2020-06-24      點擊次數:1933

 

 AYP-C100手持式藻類熒光測量儀(探頭式)是一款用于快速、測量水體葉綠素熒光參數的手持式熒光儀。它配備了浸入式光學探頭,可直接插到要測量的水體、懸濁液或培養溶液中進行測量。AquaPen 具備*的敏感度,可檢測0.5μg Chl/L的葉綠素熒光,可以檢測浮游植物濃度極低的自然水體,可用于野外和實驗室測量。

AYP-C100手持式葉綠素熒光測量儀采用調試式熒光測量技術,可設置多種參數,方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧,方便攜帶,設計新穎,操作簡單,經濟耐用,精度高穩定性好。

應用領域

 適用于光合作用研究和教學,植物及分子生物學研究,農業、林業,生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。

· 植物光合特性和代謝紊亂篩

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 長勢與產量評估

· 植物——微生物交互作用研究

· 植物——原生動物交互作用研究

典型樣品

· 地表結皮

· 地衣、苔蘚

· 表層水體藻類

· 其它

功能特點:

工作原理

利用調制式熒光測量技術,采用LED光源,選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。

實驗過程和測量參數

· Ft:瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后FtFo

· QY:光量子效率,表示光系統II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)

· OJIP:葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。

· NPQ:非光化學淬滅,表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。

· 光曲線Qy對不同光強的適應曲線。

· 可選配GPS模塊

技術參數

· 波長檢測范圍:697nm-750nm

· BOIS:可升級

· 通訊:USB或藍牙

· 存儲:4M

· 數據存儲:100,000

· 顯示:2 x 8字符黑白液晶屏

· 鍵盤:密封防水設計2

· 自動關機:5分鐘無操作

· 電源:4 AAA堿性電池或充電電池

· 電池壽命:持續測量70 h

· 低電報警

· 尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2"

· 重量:180 g, 6.5 oz

· 操作條件:溫度:0  55 ºC;相對濕度:0  95 %非冷凝

· 存儲條件:溫度:-10  +60 ºC;相對濕度:0  95 %非冷凝

· 軟件:FluorPen2.0,適用于Windows 2000XP7,實時顯示和遙控,植入GPS繪圖,EXCEL輸出

 

操作軟件與實驗結果

 

產地: 歐洲

參考文獻

Piovar J. et al. (2010): Plant Growth Regulation doi:10.1007/s10725-010-9515-4.

Vandamme D. et al. (2010): : Journal of Applied Phycology 22:525-530.

Gao Q.T. and Tam N.F.Y. (2010): Chemosphere doi:10.1016.

Kviderova J. (2010): Environmental Toxicology doi:10.1002.

Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.

Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.

附:OJIP參數及計算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

 

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